熱蛋白質(zhì)組學(xué)(Thermal Proteome Profiling,TPP)由德國(guó)海德堡的歐洲分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室(EMBL)的Mikhail M. Savitski教授自2014年起領(lǐng)導(dǎo)開(kāi)發(fā),融合了細(xì)胞熱漂移測(cè)定(Cellular Thermal Shift Assay, CETSA)的原理和多重定量質(zhì)譜的蛋白質(zhì)組學(xué)方法,能夠監(jiān)測(cè)數(shù)千種蛋白質(zhì)的熔解曲線。自推出以來(lái),它已被全球藥物靶點(diǎn)研究領(lǐng)域的科學(xué)家們廣泛認(rèn)可和推崇。
TPP技術(shù)的原理是基于配體與靶蛋白結(jié)合后,通過(guò)改變其構(gòu)象、增強(qiáng)疏水性或形成化學(xué)交聯(lián),從而改變靶蛋白的熱穩(wěn)定性。這種穩(wěn)定性可以通過(guò)測(cè)量蛋白質(zhì)的熱變性中點(diǎn)溫度(Tm)來(lái)評(píng)估,即蛋白質(zhì)解折疊50%時(shí)對(duì)應(yīng)的溫度。在經(jīng)典流程中,細(xì)胞或細(xì)胞提取物被分為10份,分別在37-67℃的遞增溫度下加熱,以覆蓋大多數(shù)蛋白質(zhì)的熔點(diǎn)范圍。加熱后提取的可溶性蛋白質(zhì)通過(guò)穩(wěn)定同位素標(biāo)記試劑TMT10進(jìn)行標(biāo)記,然后混合所有樣品并利用質(zhì)譜技術(shù)進(jìn)行數(shù)據(jù)依賴采集(DDA)分析。通過(guò)比較有無(wú)配體結(jié)合的蛋白質(zhì)的Tm和熔解曲線,可以確定靶蛋白。
TPP實(shí)驗(yàn)原理及流程
在熱蛋白質(zhì)組分析(TPP)中,數(shù)據(jù)依賴性采集(DDA)結(jié)合TMT標(biāo)記技術(shù),通過(guò)多路復(fù)用樣本提高了定量精度。但隨著數(shù)據(jù)獨(dú)立采集(DIA)技術(shù)的發(fā)展,它以更高的靈敏度和更全面的蛋白質(zhì)覆蓋率,以及降低的成本和簡(jiǎn)化的樣品制備流程,對(duì)TMT-DDA的TPP分析方法提出了有力的挑戰(zhàn),特別是在需要大規(guī)模蛋白質(zhì)組學(xué)研究的場(chǎng)合。。
2023年英國(guó)紐卡斯?fàn)柎髮W(xué)Maria Emilia Due?as教授在期刊J Proteome Res(IF=3.8)上發(fā)表了題為“Comparison of Quantitative Mass Spectrometric Methods for Drug Target Identification by Thermal Proteome Profiling”的研究論文,該研究比較了TPP中的兩種定量方法--TMT-DD和DIA的表現(xiàn),指出在TPP實(shí)驗(yàn)方法時(shí)應(yīng)考慮實(shí)驗(yàn)周期、成本、定量精度、靶點(diǎn)全面性等因素,以確保數(shù)據(jù)質(zhì)量和分析準(zhǔn)確性。
樣本:急性髓系白血?。ˋML)的THP-1細(xì)胞系。
分組:藥物處理組(用losmapimod處理)和對(duì)照組(DMSO處理)。
數(shù)目:8個(gè)不同的溫度點(diǎn)(40℃, 44℃,48℃, 52℃, 56℃, 60℃, 64℃, and 68℃)進(jìn)行。
重復(fù):三次生物學(xué)重復(fù)。
數(shù)據(jù)處理:五組,分別為:TMT-DDA組、Direct DIA組、DDA library組、Hybrid library組和DIA-NN組(Library free組)。
TPP不同方法比較實(shí)驗(yàn)流程
TMT-DDA周期更短
對(duì)于實(shí)驗(yàn)人員而言,時(shí)間就是效率。在對(duì)TMT-DDA與DIA方法的全面比較中,我們發(fā)現(xiàn)TMT-DDA以其快速的樣品準(zhǔn)備和高效的數(shù)據(jù)分析,脫穎而出成為用時(shí)最短的方法。這對(duì)于追求實(shí)驗(yàn)速度和效率的科研工作者來(lái)說(shuō),無(wú)疑是個(gè)令人欣慰的選擇。
TMT-DDA方法的樣品準(zhǔn)備時(shí)間大約是24小時(shí),但質(zhì)譜分析時(shí)間是75小時(shí),使得總體時(shí)間相對(duì)較短。DIA方法的樣品準(zhǔn)備時(shí)間大約是8小時(shí),但質(zhì)譜分析時(shí)間需要96小時(shí)(涉及每個(gè)樣品的單次上機(jī)(single-shot)分析),因此總體時(shí)間較長(zhǎng)。
TPP不同方法用時(shí)比較
整體蛋白檢測(cè)深度不分上下
其次關(guān)心的就是蛋白的鑒定深度了,若改變方法導(dǎo)致蛋白鑒定數(shù)目大幅下降,那無(wú)疑是得不償失了。通過(guò)對(duì)不同方法的蛋白以及肽段鑒定數(shù)目的比較,發(fā)現(xiàn)DIA-NN在蛋白質(zhì)鑒定深度上表現(xiàn)出色。雖然DDA與DIA的檢測(cè)方法差別較大,但是所有方法之間發(fā)現(xiàn)了已鑒定蛋白質(zhì)組的相當(dāng)大的重疊,與之前的研究一致, DIA方法和TMT-DDA之間平均67%的蛋白質(zhì)組是共有的。
TPP不同方法蛋白鑒定深度比較
熱熔曲線擬合不分上下
在熱蛋白組分析(TPP)中,蛋白鑒定數(shù)目是評(píng)估分析方法性能的一個(gè)關(guān)鍵指標(biāo),但并非唯一標(biāo)準(zhǔn)。研究指出,DIA-NN在低溫條件下鑒定的蛋白質(zhì)數(shù)目更多,而TMT-DDA在高溫條件下表現(xiàn)更佳,而高低溫的數(shù)據(jù)對(duì)于生成可靠的熔解曲線至關(guān)重要。在擬合熱熔曲線時(shí),只有滿足R2≥0.8和平臺(tái)值≤0.3的曲線才被納入分析,以確保蛋白質(zhì)熔點(diǎn)計(jì)算的準(zhǔn)確性。TMT-DDA平均量化了4497個(gè)蛋白的曲線,而DIA-NN生成了4458條曲線,略少于TMT-DDA。此外在選擇分析方法時(shí)需考慮實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和目標(biāo)蛋白熔點(diǎn)的特性,以確保數(shù)據(jù)質(zhì)量和分析準(zhǔn)確性。
TPP不同方法蛋白擬合曲線比較
TMT的壓縮效應(yīng)
在TPP分析中,TMT標(biāo)記可能會(huì)影響測(cè)量敏感度。研究以藥物losmapimod的已知靶標(biāo)MAPK14為例,發(fā)現(xiàn)DIA成功實(shí)現(xiàn)了從對(duì)照組的44.6 ± 0.1°C到實(shí)驗(yàn)組的50.0 ± 0.3°C的精確溫度變化測(cè)量。相比之下,TMT-DDA方法測(cè)得的MAPK14的熔解溫度比DIA平均高出0.9°C,這可能源于前體離子共分離導(dǎo)致的定量準(zhǔn)確性降低,比率壓縮造成的熱位移測(cè)量不足,DIA方法顯示出對(duì)熱穩(wěn)定性微小變化的高敏感性。
藥物靶點(diǎn)MAPK14在不同檢測(cè)方法中的表現(xiàn)
TMT-DDA熱位移定量精度更佳
在評(píng)估熔解曲線的蛋白質(zhì)的熱位移時(shí),研究觀察到LFQ-DIA相較于TMT-DDA產(chǎn)生了略高的平均熱位移(0.6 ± 1 °C對(duì)比-0.2 ± 1 °C),暗示了LFQ-DIA在定量上的微弱不精確性。此外,在較高溫度下,LFQ-DIA在熔點(diǎn)測(cè)定的精度上不如TMT-DDA。DIA方法在蛋白質(zhì)組成一致的樣本中最為準(zhǔn)確,因?yàn)樗蕾囉诳杀鹊碾亩纹拭孢M(jìn)行無(wú)標(biāo)記定量。在較低溫度時(shí),由于蛋白質(zhì)熔解較少,DIA能提供可靠的定量結(jié)果。但在較高溫度下,許多蛋白質(zhì)可能已經(jīng)達(dá)到其熔點(diǎn),此時(shí)LFQ-DIA的定量準(zhǔn)確性可能降低。因此,在涉及較高溫度范圍的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)中,TMT-DDA因其在準(zhǔn)確性和可靠性上的輕微優(yōu)勢(shì),應(yīng)被考慮作為首選方法。
TMT-DDA熱位移定量精度更佳
TMT-DDA鑒定靶點(diǎn)更全面
在分析不同質(zhì)譜方法篩選藥物靶點(diǎn)的能力時(shí),研究發(fā)現(xiàn)TMT-DDA技術(shù)能夠鑒定出DIA方法未能檢測(cè)到的2個(gè)靶點(diǎn)。其中一個(gè)蛋白靶點(diǎn)的熱穩(wěn)定性增加,而在DIA數(shù)據(jù)中并未被捕捉到,這提醒后續(xù)研究在方法選擇上需謹(jǐn)慎。此外,TMT-DDA還鑒定出另一個(gè)靶點(diǎn),其在DIA數(shù)據(jù)中因生物重復(fù)間的高變異性而被濾除,這暗示TMT-DDA在處理噪聲方面可能具有更高的容忍度。這些發(fā)現(xiàn)突顯了在藥物靶點(diǎn)鑒定中,不同質(zhì)譜采集技術(shù)各有優(yōu)勢(shì),同時(shí)也揭示了它們?cè)跀?shù)據(jù)解析上的特定局限性。
在評(píng)估TPP實(shí)驗(yàn)的檢測(cè)方法時(shí),盡管TMT-DDA和DIA在蛋白鑒定和曲線擬合上各有所長(zhǎng),但TMT-DDA以其快速的實(shí)驗(yàn)周期和在高溫區(qū)域的高定量精度而更具優(yōu)勢(shì),在熱位移定量精度上略勝一籌。然而,也需注意TMT標(biāo)記可能導(dǎo)致的壓縮效應(yīng),這可能會(huì)影響Tm值的準(zhǔn)確測(cè)量。因此,選擇最佳方法時(shí),應(yīng)綜合成本、實(shí)驗(yàn)效率、定量準(zhǔn)確性和靶點(diǎn)鑒定的全面性做出選擇~
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參考文獻(xiàn)
[1] Savitski M M, Reinhard F B M, Franken H, et al. Tracking cancer drugs in living cells by thermal profiling of the proteome [J]. Science, 2014, 346(6205).
[2] George A L, Sidgwick F R, Watt J E, et al. Comparison of Quantitative Mass Spectrometric Methods for Drug Target Identification by Thermal Proteome Profiling [J]. Journal of Proteome Research, 2023, 22(8): 2629-2640.
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